Livestock Research for Rural Development 17 (5) 2005 Guidelines to authors LRRD News

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Utilização da técnica de produção de gás para determinar a cinética de fermentação dos carboidratos estruturais e não estruturais em sorgo para forragem

R R Noguera, E O Saliba*, L C Gonçalves* e R M Mauricio**

Universidad de Antioquia, Escuela de Producción Agropecuaria - GRICA
ricardonoguera@agronica.udea.edu.co
*Universidade Federal de Minas Gerais, Departamento de Zootecnia, Minas Gerais, Brasil
**FundaçãoEzequel Dias FUNED, Minas Gerais Brasil


Resumo

 

Amostras da forragem inteira e a fibra em detergente neutro (FDN) de cinco genótipos de sorgo colhidos em três estádios de maturação foram incubados in vitro através da técnica de produção de gás com o objetivo de estudar a cinética de fermentação dos carboidratos estruturais e não estruturais. As curvas de produção de gás da fração solúvel em detergente neutro (FSDN) foram obtidas pela diferença entre o volume de gás produzido pela forragem inteira e o volume de gás produzido pela FDN (curvas de subtração).

 

Os maiores volumes de gás para a forragem inteira e a FSDN foram observados na segunda e terceira época de colheita do material. A FDN precisou de prolongados períodos de tempo para que a produção de gás tivesse lugar. Equações de regressão entre o volume de gás e a degradabilidade da MS in vitro foram estabelecidas. As equações de regressão predisseram com boa aproximação a degradabilidade ruminal dos cinco genótipos de sorgo. Quanto aos parâmetros de fermentação estimados pelo modelo foi verificado que a forragem inteira produziu uma maior quantidade de gás quando comparada com os volumes de gás produzidos pela FDN e a FSDN. As maiores taxas de produção de gás foram verificadas na FSDN o que mostra a eficiente utilização desta fração pelos microorganismos ruminais.

Palavras chave: Degradabilidade, forragem, in vitro, produção de gas, Sorgo.


Use of the gas production technique to determine the kinetics of fermentation of the structural and non structural carbohydrates in sorghum forage

Abstract

 

Samples of unfractionated forage and neutral-detergent fiber (NDF) of five sorghum genotypes harvested in different stage of maturity were incubated in vitro using the gas production technique to study the kinetics of fermentation of structural and non structural carbohydrates. The fermentation of neutral detergent-soluble (NDS) fraction was measured using a curve subtraction technique with in vitro gas production data from the whole forage and the isolated neutral detergent-extracted fiber.

 

The higher volumes of gas were observed in the second and third crop time to the whole plant and NDS fraction. The NDF fraction needed long periods of time so that the production of gas begins. Regression equations were established between the volume of produced gas and the degradation of the dry matter in vitro. The regression equations predicted with good approach the degradation in the rumen to the five sorghum genotypes. The higher rates of gas production were observed to NDS fraction indicating an efficient use of this fraction for the ruminal microorganisms.

Key words: Degradability, forage, gas production, in vitro, kinetics, Sorghum.

 


Introdução

 

As forragens contem quantidades variáveis de material solúvel que pode ser extraído mediante sua solubilização em água ou soluções tampão (Van Soest 1994). Esta fração solúvel esta constituída por minerais, proteínas, ácidos orgânicos, açúcares simples e cadeias curtas de polissacarídeos. Os carboidratos solúveis são digeridos pelos microorganismos ruminais mais rapidamente que os carboidratos estruturais como a celulose ou os polissacarídeos de reserva como o amido (Chesson e Forsberg 1988). Pouco é conhecido sobre a cinética de digestão da fração solúvel das forrageiras, isto se deve ao fato de que os estudos de cinética in vitro e in situ acompanham o desaparecimento dos componentes insolúveis da parede celular e a que as técnicas gravimétricas empregadas por estes sistemas não quantificam o material solúvel.

 

Um outro aspecto desconhecido sobre a cinética de digestão da fração solúvel das forrageiras é a possível interação entre a taxa e a extensão da digestão do material potencialmente degradável e a composição da fração solúvel, poucos trabalhos relatam o impacto da fração solúvel sobre a digestão da fibra (Hiltner e Dehority 1983; Pivonka e Firkins 1993; Mertens e Loften 1980). A técnica de produção de gás oferece a possibilidade de estudar a fração solúvel através da técnica de curvas de subtração que permite quantificar e analisar a cinética de digestão da fração solúvel em detergente neutro (FSDN) das forrageiras (Schofield e Pell 1995b).

 

Os atuais sistemas de avaliação de rações como o NRC (1996) e o CNCPS (Cornell Net Carbohydrate and Protein System) (Fox et al 1992; Sniffen et al 1992) predizem o suprimento de nutrientes baseados na estreita relação entre as taxas de digestão e passagem das diferentes frações que constituem o alimento. As taxas de digestão obtidas através da técnica de produção de gás de cada uma destas frações podem ser empregadas nestes modelos nutricionais. Pell et al (1997) afrima que os dados de produção de gás podem prover estimativas mais acuradas do valor energético dos alimentos que as estimativas feitas a partir dos análises de fibra.

 

O presente estudo teve como objetivos determinar como a concentração e a cinética de digestão dos carboidratos solúveis e estruturais varia com o estádio de maturidade da forragem, determinar as possíveis interações entre as cinéticas de digestão das frações solúveis e estruturais e estimar a degradação da materia seca (MS) a partir do volume de gás produzido pelo substrato.

 


Materiais e métodos

 
Fonte e preparação dos substratos

 

Cinco híbridos de sorgo para forragem foram seleccionados para ser empregados neste estudo. Os híbridos Massa 3, Volumax, BR601, BR700 e BR701 foram plantados nas dependencias da EMBRAPA Centro Nacional de Pesquisa Milho e Sorgo (CNPMS) em Minas Gerais, Brasil. Cada híbrido foi plantado em três locais diferentes que constituiram as repetições e coleitados em três épocas de corte diferentes (corte 1= sete días após o florescimento; Corte 2= 28 días após o florescimento; Corte 3= 49 días após o florescimento).

 

Imediatamente após a colheita as plantas enteiras de sorgo foram picadas em partículas com tamanho médio de dois centímetros, empregando-se uma picadeira estacionaria Nogueira modelo DPM-4. O material dos cinco genótipos de sorgo nas três épocas de corte foi individualmente homogenizado, colocado em bandejas de alumínio de peso conhecido e seco em estufa de ventilação forçada com temperatura de 60-65º C, por 72 horas. Após este procedimento, todas as amostras foram moidas através de peneira de 1.0 mm para as análises químicas e o estudo in vitro.

 

Devido ao grande número de substratos (5 híbridos x 3 repetições x 3 épocas de corte = 45 materiais), amostras compostas das três repetições de cada genótipo en cada epoca de corte foram feitas, fazendo um total de 15 substratos para análise (5 genótipos x 3 épocas de corte). Além destes 15 substratos, que constituiram o material original, extrações de fibra em detergente neutro (FDN) de cada material foram feitas de acordo com a seguinte metodología: 4 gramas de cada genótipo em cada época de corte foram pesadas e colocadas em bekers com capacidade para 600 ml, 400 ml de detergente neutro foram adicionados a cada becker e colocados para ferver a 105º C por uma hora (Van Soest et al 1991; Pell e Schofield 1993). Após esse tempo, o conteúdo dos bekers foi filtrado através de sacos de náilon com porosidade de 50mm, o material retido nos sacos foi lavado exaustivamente com água destilada quente e 200 ml de acetona, visando remover todo o detergente da amostra. Inmediatamente após a lavagem o material foi seco em estufa de ventilação forçada a 50º C por 72 horas. Este procedimento foi repetido varias vezes até conseguir a quantidade de material suficiente para a realização do experimento.

 
Técnica de produção de gás

 

Os híbridos de sorgo e suas respectivas frações de FDN foram avaliados empregando a técnica de produção de gás descrita por Theodorou et al (1994). Para o processo de incubação foram usados frascos de vidro com capacidade para 125 ml. Antes do inicio do experimento os frascos de incubação foram lavados com abundante agua e secos em estufa a 110º C por 12 h. Após a secagem os frascos foram saturados com CO2 e um grama de material original e sua respectiva fração de FDN, foram pesados e colocados em frascos individuais.

 

Um dia antes do inicio do experimento 90 ml de meio de cultura preparado como descrito por Mauricio et al (2001) foi adicionado manualmente a cada frasco mediante a utilização de uma proveta graduada. Os frascos foram vedados com rolhas de borracha (14 mm) e mantidos em geladeira a 4º C para evitar qualquer tipo de fermentação. Cinco horas antes da inoculação os frascos foram removidos da geladeira e levados para estufa a 39º C.

 
Preparação do inoculo e inoculação

 

O líquido ruminal foi obtido de uma vaca fistulada mantida no Hospital Veterinário na Escola de Veterinária da Universidade Federal de Minas Gerais. O animal doador era alimentado com silagem de milho "ad libitum" e 2 kilos de ração concentrada. A coleita do inoculo foi feita às 06:30 h antes da primeira refeição. O líquido ruminal foi retirado manualmente de varias partes do rúmen e armazenado em garrafas térmicas previamente aquecidas com agua a 40º C. Após a coleta, o liquido ruminal foi levado para o Laboratório de Nutrição Animal e filtrado através de duas camadas de panos de algodão, a parte sólida retida nos panos foi rápidamente transferida para um liquidificador com certa proporção de líquido ruminal e liquidificado por 20 segundos. Após este procedimento o material liquidificado foi filtrado novamente e transferido para um erlenmeyer mantido em banho-maria a 39º C sendo continuamente saturado com CO2. Este procedimento foi feito para garantir que o inoculo resultante estivesse composto por microorganismos ruminais aderidos e não aderidos à fibra (Theodorou et al 1994).

 

Os frascos com o meio de cultura e o substrato foram inoculados com 10 ml de líquido ruminal usando uma seringa graduada de 10 ml. Os frascos totalmente vedados foram agitados manualmente, transferidos para estufa a 39º C (tempo zero) e incubados por um periodo de 96 horas. As leituras de gás foram realizadas nos horarios 2, 4, 6, 8, 10, 12, 15, 19, 24, 30, 36, 48, 72 e 96 horas pósincubação, empregando um transductor de pressão (Bailey and Mackey, Birmingham, UK). Após as leituras nos horários 6, 12, 24, 48 e 96 horas, uma quantidade determinada de frascos contendo o material original e a fração de FDN foi removida com seus respectivos brancos e filtrada através de cadinho de filtragem (porosidade 1) para acompanhar o processo de degradação da MS e a materia orgânica (MO). A MS degradada foi determinada pela secagem a 110º C até obtenção de peso constante. A MO degradada foi obtida pela diferença após obtenção das cinzas (6h a 500º C).

 
Curvas de subtração

 

Neste experimento foram diretamente determinadas as curvas de produção de gás para o material original e para a FDN. A contribuição na produção de gás da fração solúvel em detergente neutro (FSND) foi calculada através da subtração da produção acumulativa de gás do material original e a produção acumulativa de gás da FDN corrigida para a quantidade de FDN contida no material original de acordo com a metodologia sugerida por Schofield e Pell (1995a) e Stefanon et al (1996).

 
Curvas de ajuste

 

As curvas de produção de gás foram ajustadas através de um modelo gompertz que supõe que a taxa de produção de gás é proporcional à atividade microbiana, mas a proporcionalidade diminue com o tempo de incubação o que pode ser interpretado como a perda de eficiência na taxa de fermentação com o tempo. A equação que representa este modelo é:

 

VT=VF x exp(- c)(exp (-A x t))

 

Onde VT corresponde a volume de gás no tempo t, VF é o volume de gás correspondente à completa digestão do substrato (asintota), A é um fator de eficiência microbiana, c representa uma taxa específica semelhante à taxa de degradação (h-1). As curvas de ajuste e as estimativas dos parâmetros de interesse biológico foi feito através do processo interativo do algoritmo Marquardt, com a ajuda do procedimento para modelos não lineares (PROC NLIN) do Statistical Analysis Systems Institute Inc. (1985).

 
Delineamento experimental e Análises estatísticas

 

As análises estatísticas para a comparação dos tratamentos quanto aos valores de composição química e parâmetros estimados através das curvas de produção de gás foram feitas usando-se o General Linear Model Procedures (PROC GLM) do SAS (1985) segundo um delineamento fatorial 5 x 3 (5 genótipos x 3 épocas de corte) em concordância com o seguinte modelo:

 

Yi, j ,k = m+ Mi + Tj + (MT)i, j + ei, j, k

 

Onde:

m = Média geral da varável em estudo;

Mi = Efeito do i-ésimo genótipo (i = Massa 3, Volumax, BR 601, BR 700 e BR 701);

Tj = Efeito do j-ésimo corte (j = sete, 24 e 49 dias);

(MT)i, j = Efeito do i-ésimo genótipo com o j-ésimo corte;

ei,j,k = Erro experimental;

 

As comparações das medias dos tratamentos e suas respectivas interações foram feitas usando-se o procedimento PROC GLM (OPTION LSMEANS) do SAS (1985).

 


Resultados e discussão

 

A composição química dos cinco genótipos de sorgo em cada estádio de maturação é apresentada na tabela 1.

Tabela 1. Composição química (% da MS) dos cinco genótipos de sorgo nas três épocas de corte

 

MS, %

MO

PB

FDN

FDA

Lignina

Corte 1

 

 

 

 

 

 

Massa 3

47,66

95,84

3,47

76,46

40,75

5,3

Volumax

43,85

94,94

6,43

72,27

34,88

5,57

BR 601

24,75

96,00

3,59

75,83

45,24

7,43

BR 700

40,47

95,90

5,45

76,42

36,56

5,62

BR 701

40,99

95,65

5,58

73,19

40,83

7,18

Corte 2

 

 

 

 

 

 

Massa 3

59,08

94,75

5,39

80,00

35,29

5,42

Volumax

55,22

95,34

6,58

74,22

36,61

5,13

BR 601

24,58

95,34

4,5

75,77

43,09

6,75

BR 700

50,28

95,81

6,98

74,66

36,46

6,17

BR 701

54,86

96,78

4,85

72,90

40,06

7,41

Corte 3

 

 

 

 

 

 

Massa 3

64,60

96,47

4,66

79,31

37,76

5,54

Volumax

56,01

94,55

7,13

71,75

35,37

5,4

BR 601

26,11

95,49

4,51

77,32

42,93

8,47

BR 700

54,93

95,98

5,18

78,21

37,78

6,68

BR 701

54,50

95,57

4,15

77,41

44,21

7,96

O modelo gompertz descrito por Noguera et al (2004), mostrou melhor capacidade de ajuste em termos de coeficiente de determinação e soma quadrado do erro (SQE) na estimativa dos parâmetros da cinética de produção de gás (tabela 2).

Tabela 2. Parâmetros da cinética de fermentação estimados através da técnica de produção de gás para cinco genótipos de sorgo colhidos em três épocas de corte

Corte

Genótipo

Parâmetros de  fermentação 1

R2 3

VF , ml/g de MS

C, % /h-1

A

1 2

Massa 3

251,63 A

0,05 A

3,44 A

99,86

 

Volumax

227,34 B

0,047 A

3,32 A

99,80

 

BR 601

243,54 AB

0,044 A

3,25 A

99,79

 

BR 700

243,06 AB

0,055 A

3,34 A

99,75

 

BR 701

250,36 A

0,058 A

3,52 A

99,77

2

Massa 3

272,88 A

0,062 AB

3,68 A

99,77

 

Volumax

242,96 BC

0,056 AB

3,87 A

99,87

 

BR 601

252,26 AB

0,045 B

3,37 A

99,77

 

BR 700

246,25 ABC

0,063 AB

3,43 A

99,63

 

BR 701

221,83 C

0,065 A

3,13 A

99,70

3

Massa 3

263,48 A

0,056 A

3,6 8 A

99,92

 

Volumax

229,17 B

0,058 A

3,49 A

99,81

 

BR 601

244,57 AB

0,046 A

3,14 A

99,78

 

BR 700

244,46 AB

0,054 A

3,68 A

99,81

 

BR 701

256,07 AB

0,057 A

3,83 A

99,87

1 Parâmetros estimados pelo modelo gompertz VT=VF x exp(– c)(exp (-A x t)), VF = volume de gás correspondente à completa digestão do substrato (asintota); c = taxa constante de produção de gás do material potencialmente degradável.  A = fator constante de eficiência microbiana.
2 Em um mesmo corte, letras maiúsculas iguais nas colunas indicam médias semelhantes para genótipos.
3 Coeficiente de determinação

Como verificado na tabela, na primeira época de colheita do material houve diferenças estátisticas (p<0.05) entre os genótipos em estudo para a variável volume de gás produzido. Os maiores valores foram observados para os genótipos Massa 3 (251.63 ml/g de MS) e BR 701(250.36 ml/g de MS) apresentado diferenças estatísticas significativas unicamente para o genótipo Volumax (227.3 ml/g de MS). Os genótipos BR 601 e BR 700 produziram volumes de gás muito próximos (243.54 e 243.06 ml /g de MS, respectivamente) verificando-se apenas variações numéricas quando comparados com os genótipos Massa 3, BR 701 e Volumax. O modelo estimou semelhantes taxas de degradação e fatores constantes de eficiência microbiana para todos os genótipos, sem que foram verificada diferenças estatísticas (p>0.05).

 

Na segunda época de colheita do material, significativas diferenças (p>0.05) nos valores médios dos volumes de gás produzido foram verificadas entre genótipos. Os genótipos Massa 3 (272.88 ml /g de MS), BR 601(252.26 ml /g de MS) e BR 700 (246.25 ml /g de MS) apresentaram os maiores volumes, verificando-se apenas diferenças numéricas entres seus valores médios. Os menores valores foram registrados para os genótipos BR 701 (221.83 ml /g de MS) e Volumax (242.96 ml /g de MS) embora tenham sido estatisticamente equivalentes (p>0.05) dos genótipos BR 700 e BR 601 respectivamente.

 

Equivalentes taxas de produção de gás (c) (p>0.05) foram estimadas pelo modelo para os genótipos BR 701 (6.5 ml/h), BR 700 (6.3 ml/h), Massa 3 (6.2 ml/h) e volumax (5.6 ml/h). A menor taxa de produção de gás foi verificada no genótipo BR 601 com 4.5 ml /h, cujo valor mostrou ser estatisticamente inferior do registrado para o genótipo BR 701. Os fatores de eficiência microbiana foram equivalentes entre genótipos (p>0.05) variando de 3.13 a 3.87.

 

Quando comparados os volumes de gás produzidos na terceira época de colheita do material, nenhuma diferença estatística foi observada entre os valores médios dos genótipos Massa 3 (263.48 ml /g de MS), BR 701 (256.07 ml /g de MS), BR 601 (244.57 ml /g de MS) e BR 700 (244.46 ml /g de MS). Já o genótipo Volumax registrou o menor volume de gás com 229.17 ml /g de MS apresentando diferenças estatísticas (p>0.05) unicamente para o genótipo Massa 3, mostrando-se equivalente com os outros materiais avaliados neste experimento. Nenhuma diferença estatística foi observada entre genótipos para as taxas de produção de gás e os fatores de eficiência microbiana cujos valores médios variaram de 4.6 a 5.8 ml/h e de 3.14 a 3.83.

 

Houve interação estadisticamente significativa (P< 0.05) entre os genótipos e o estádio de maturação(tabela 2). As maiores produções de gás foram observadas na segunda e terceira época de colheita do material em todos os genótipos quando comparadas com a primeira. Estas maiores produções de gás podem ser atribuídas ao fato de que com o avanço no estádio de maturidade, as plantas de sorgo apresentaram uma maior quantidade de panículas e grãos em estado pastoso e farináceo, sendo assim, maiores quantidades de amido teriam propiciado um maior potencial de fermentação e produção de gás nestas épocas de corte.

 

Da mesma forma em todas as épocas de corte foram observadas diferenças significativas (p<0.05) entre genótipos para a variável volume de gás produzido. Isto sugere que existem diferenças entre cultivares na sua composição química principalmente no conteúdo de carboidratos, uma vez que alimentos com maiores quantidades de carboidratos solúveis propiciam uma maior fermentação ruminal e consequentemente, maior produção de gás em relação a outros com maior proporção de carboidratos estruturais (Parede celular).

 

De acordo com Beuvink e Kogut (1993) a parede celular das forrageiras pode ser dividida em três frações: 1. Fração solúvel de rápida fermentação, 2. Fração lentamente fermentável e 3. Fração não fermentável, principalmente constituída por material lignificado. As interações e a proporção de cada uma destas frações nas plantas forrageiras determina a taxa e a extensão da fermentação ruminal.

 

A técnica de produção de gás permite o estudo da cinética de fermentação dos carboidratos estruturais e da fração solúvel dos alimentos através da técnica de curvas de subtração, que permite quantificar e analisar a cinética de digestão da fração solúvel em detergente neutro (FSDN) das forrageiras. A fração solúvel se encontra principalmente constituída por proteínas, minerais, ácidos orgânicos açúcares simples e alguns polissacarídeos não estruturais. Pouco é conhecido sobre a cinética de digestão da fração solúvel das forrageiras e as possíveis interações que existem entre a taxa e a extensão da digestão do material potencialmente degradável e a composição da fração solúvel. Por tal motivo, foi desenhado um experimento onde o material original e a FDN de cinco genótipos de sorgo colhidos em diferentes épocas de corte foram incubados in vitro através da técnica de produção de gás para estudar sua cinética de fermentação.

 

As curvas de produção de gás para os cinco genótipos de sorgo colhidos em três estádios de maturação, normalizados para a quantidade de material estudado (1g de MS) são apresentados na figura 1.

Figura 1. Curvas de produção acumulativa de gás da forragem inteira (♦), FDN (■) e FSDN(▲)
de cinco genótipos de sorgo colhidos em três estádios de maturidade

A contribuição na produção de gás da fração FSDN mostrou ser maior na segunda e terceira época de colheita do material quando comparada com a primeira, o que confirma que a presença de uma maior quantidade de grãos em estado pastoso e farináceo contribuindo na maior produção de gás nestas épocas de corte, pela maior quantidade de carboidratos rapidamente fermentáveis. Independentemente da época de corte e do genótipo a FDN precisou de prolongados períodos de tempo para que a produção de gás tivesse lugar o que mostra a dificuldade dos microorganismos para colonizar e degradar substratos deficientes em carboidratos rapidamente fermentáveis.

 

As curvas na figura 1 sugerem que a FSDN tem um importante papel no inicio do processo fermentativo. A fração solúvel constitui um substrato energético de rápida fermentação para os microorganismos, facilitando assim os processos de adesão e colonização do substrato, mas sua importância começa a diminuir com o transcorrer do tempo quando uma maior quantidade de constituintes da parede celular começam a ser disponíveis. A figura 2 mostra a percentagem média de gás produzido pela FSDN dos cinco genótipos de sorgo, nas três épocas de corte como uma função do tempo. Para todos os genótipos esta percentagem foi maior de 90% nas primeiras 12 horas de incubação e diminuiu em torno de 50% após de 24 horas de iniciado o processo fermentativo. Com 48 horas de incubação a participação da FSDN na produção total de gás é aproximadamente do 12 % o que indica que em horários superiores a 24 horas de incubação uma grande parte da produção de gás procede da fermentação dos constituintes estruturais da parede celular.

Figura 2. Produção média de gás da fração solúvel em detergente neutro (FSDN) como percentagem da quantidade total de gás produzida durante a incubação in vitro.

Pell e Schofield (1993) trabalhando com alfafa, trevo e pasto guinea relataram uma relação linear entre o volume de gás produzido e a degradabilidade da MS, encontrando que por cada mg de MS fermentado eram produzidos 0.37 ml de gás. Para examinar a mesma relação entre a degradação da MS e o volume de gás produzido pelos cinco genótipos de sorgo empregados neste experimento foi feita uma análise de regressão. As equações que predizem a degradação da MS a partir do volume de gás produzido durante a incubação in vitro são apresentadas na tabela 3.

Tabela 3. Equações de regressão entre o volume de gás produzido (ml) e degradação in vitro da MS de cinco genótipos de sorgo colhidos em três estádios de maturidade

Genótipo

Corte

Equações de Regressão 1

R2 2

% degradação da
MS estimada 3

% degradação 
in situ 4

Massa 3

1

Y = 9,986 + 0,224 X

0,99

66,66

64,10

Massa 3

2

Y = 13,904 + 0,223 X

0,97

72,65

58,61

Massa 3

3

Y = 9,000 +  0,236 X

0,99

71,13

58,00

Volumax

1

Y= 12,016 + 0,227 X

0,99

61,40

61,41

Volumax

2

Y = 9,614 + 0,256 X

0,99

68,25

63,52

Volumax

3

Y = 10,462 + 0,242 X

0,98

66,32

70,07

BR 601

1

Y = 9,043 + 0,246 X

0,98

70,46

62,68

BR 601

2

Y = 13,899 + 0,24 X